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　　【专利摘要】本发明涉及高效纤维素酶产生菌及产酶条件，具体的说是一株产纤维素酶细菌及产酶条件。细菌(Novosphingobium sp.)YIC32，已于2016年4月25日保藏于广东省微生物菌种保藏中心(简称GDMCC，地址为：广东省广州市先烈中路100号大院59号楼5楼)，其保藏编号为GDMCC No.60031。本发明菌株生长速度快，纤维素酶活高，产酶能力强，不会对自然界的碳循环产生负面影响，不会对环境造成危害，是应用于秸秆腐熟生产有机肥料、秸秆还田、促进生态恢复和保护生态环境、饲料加工等行业的好材料。在农林废弃物回收利用过程中可发挥重要作用。GDMCC No：21

　　[0001] 本发明涉及产纤维素酶，具体的说是一种产纤维素酶细菌及应用。

　　[0002] 纤维素是自然界中分布最为广泛、产量最为丰富的可再生资源，广泛存在于植物 的根茎叶中。我国是农业大国，每年秸杆产量约为7亿吨左右，秸杆中的主要成分为纤维素。 纤维素降解后可转化为生物燃料、优质饲料等物质。然而在自然界中，纤维素降解困难，主 要源于其特殊的结构。纤维素是由葡萄糖通过β_(1，4)糖苷键连接而成的线状大分子聚合 物。纤维素酶是能够将纤维素降解为葡萄糖的一类酶的总称，根据其催化功能分为三大类： 1)葡聚糖内切酶(1，4-0-D-glucan glucanohydrolase):该酶能够随机切割纤维素多糖链 内的无定型区，产生不同长度的寡糖和新链末端；2)葡聚糖外切酶（l，4-i3-D-glucan cellobilhydrolase):作用于纤维素还原性和非还原性的纤维素多糖链的末端，产生葡萄 糖或纤维二糖;3)β_葡聚糖苷酶(β-l，4-glucosidase):该酶功能为水解纤维二糖产生葡萄 糖。由于纤维素酶的三个组分经过协同作用，将大分子的纤维素降解为低分子量的寡糖、双 糖或多糖，而被广泛应用于食品加工、酿造、造纸、饲料添加剂、纺织、医药等工农业领域。使 得纤维素酶成为酶制剂工业中的一个新的增长点。纤维素酶主要由微生物产生，受制于纤 维素酶制剂工业化生产的因素主要有菌种和酶活及产量，因而高酶活微生物的筛选和产酶 条件的优化尤为重要。

　　[0006] 所述产纤维素酶细菌分离自粉碎的苹果树枝条自然发酵腐熟的木肩中，通过纤维 素酶活的测定及菌种鉴定表明，该菌是一株产酶能力强、纤维素酶活高的细菌菌 (Novosphingobium sp.)。对该菌进行16S rRNA基因序列分析，并通过在GenBank中比对发 现，本发明的细菌扩增的16S rRNA序列与Novosphingobium panipatense SM16T(登录号： NR044210 )相似性最高，为99 %。从而将分离出来的细菌命名为Novosphingobium sp.YIC32。

　　[0010] 更进一步的说，将所述细菌(Novosphingobium sp. )YIC32在羧甲基纤维素钠产酶 培养基中培养获得纤维素酶;其中，羧甲基纤维素钠产酶培养基的pH=5、羧甲基纤维素钠 浓度为12.5g/L、NaN0 3浓度为5g/L时纤维素内切酶酶活最高，为2·45±0·05?υ/πιΙ^ρΗ = 5、 羧甲基纤维素钠浓度为12.5g/L、NaN03浓度为3g/L时滤纸酶活、外切酶酶活最高，产酶能力 最强，滤纸酶活达20.75 ± 1.61 IU/mL，外切酶产酶能力最强，酶活达47.72 ± 0.24IU/mL。

　　[0012] 1.本发明的细菌YIC32具有产纤维素酶活高的特性，该菌在纤维素筛选平板上降 解圈/菌落直径达到4.0，在发酵培养基中酶活较高，滤纸酶活为12.37 ± 0.13IU/mL，内切酶 酶活为 2.45 ± 0.05IU/mL，外切酶酶活为 23.60 ± 0.887IU/mL。

　　[0014] 3.本发明菌株分离自猜杆腐熟发酵的猜杆中，属于Novosphingobium菌株，因而无 毒无害，未经遗传改造，可放心应用到秸杆堆肥腐熟、秸杆还田、饲料加工、纤维素酶工程领 域中。

　　[0015] 图1为本发明实施例提供的菌株YIC32产纤维素酶的刚果红染色前照片。

　　[0016] 图2为本发明实施例提供的菌株YIC32产纤维素酶的刚果红染色照片。

　　[0017]图3为本发明实施例提供的菌株YIC32培养条件优化前后纤维素酶酶活。

　　[0018] 下面结合实施例对本发明作进一步说明。实施例旨在对本发明进行举例描述，而 非以任何形式对本发明进行限制。

　　[0020]从粉碎的苹果树枝条堆肥腐熟物中采集约lg腐熟物，进行梯度稀释，从ΠΓ1~10 _8,分别吸取l〇〇yL悬浊液进行涂布至羧甲基纤维素钠固体培养基，28°C倒置培养3-5天，分 别挑取单菌落至PDA培养基平板，反复划线直至纯化后转接至PDA培养基斜面(参见图1)。将 纯化后的菌株分别转接至羧甲基纤维素钠固体培养基，培养3天，测定菌落直径后，用lmg/ ml的刚果红溶液染色lh，弃去染料，加入lmol/L的NaCl溶液脱色lh，然后用去离子水冲洗3-5遍后测定透明圈直径。一般说来，比值的大小与菌株降解纤维素能力大小有关。水解圈和 菌株直径的比值越大，菌株降解纤维素的能力越强，因此比值大小的定性试验，直接反映了 菌降解纤维素的的能力。因此，本研究选取了水解圈和菌株直径的比值最大的菌株YIC32作 为研究对象。

　　[0024] 将上述纯化获得的产纤维素酶活高的菌株进行菌落观察，在TOA固体培养基上，菌 落表面湿润，黄绿色，为典型细菌的表型特征。

　　[0025] 分子鉴定:为了确定本实施细菌菌株YIC32的系统进化地位，对其16S rRNA基因序 列测定与系统发育分析。

　　[0030] 上述细菌菌菌株YIC32降解纤维素能力强，酶活高，未进行遗传改造。当菌体被释 放入自然环境后，对人、动植物无害，不污染环境，不能够促进秸杆还田，农林废弃物的降 解，在农业上有潜在的应用价值。

　　[0032]短期保藏方式为，接种至PDA固体斜面，待菌落长好后保藏于4°C冰箱内，此保藏方 式用于不超过3个月短期保藏；

　　[0033] 长期保藏方式为:将细菌菌体加入终浓度为20%甘油中混匀并保藏至-80 °C冰箱 中，此保藏方式大约可保藏10年。

　　[0036]将上述获得细菌菌株YIC32点接至羧甲基纤维素钠培养基固体平板上，28°C培养5 天，测定菌落直径后，用lmg/mL的刚果红溶液染色lh后，弃去染料，加入lmol/L氯化钠溶液 脱色lh，测定透明圈直径。透明圈直径/菌落直径为4.0(参见图1，2)，因此，该菌株有着很强 的降解纤维素能力。

　　[0039] 对产纤维素酶菌株进行酶活的测定，酶活力的测定参考Miller G.L的DNS法，这种 方法可以对菌株产纤维素酶活强度进行有效定量。酶活力定义在50°C条件下lmL粗酶液在 lmin内水解生成1 .Oyg的葡萄糖，称为1个纤维素酶酶活力单位(yg/min，IU)。

　　[0040] 将上述获得菌株接种到50ml(100ml三角瓶)羧甲基纤维钠液体培养基中，于28°C、 180r/min摇床培养，3d后取菌液，6000r/min离心10min，上清即为粗酶液。

　　[0043] ①滤纸酶活的测定。将新华1号滤纸（lcmX3cm)卷成小卷，放进15ml EP管内，加入 1.75mL HAc-NaAc缓冲液(pH=4.8)，再加入0.25mL粗酶液，轻轻摇匀，使滤纸完全浸泡在液 体中，50°C保温lh后，加入3ml DNS溶液，放于沸水浴中煮沸lOmin，用冷水立即终止反应。在 波长为540nm下测定光吸收值(0D值）。

　　[0044]②内切酶活测定。移取含有0.5%CMC-Na的醋酸缓冲液1.75mL于试管中，加入粗酶 液0.25mL，50°C保温30min，加入3ml DNS溶液，放于沸水浴中煮沸lOmin，置冷水中终止反 应。在波长为540nm下测定光吸收值(0D值）。

　　[0045] ③外切酶活测定。移取含有0.5%微晶纤维素的醋酸缓冲液1.75mL于试管中，加入 酶液0.25mL，于50°C保温2h后，加入3ml DNS溶液，置沸水浴中煮沸lOmin，置冷水中终止反 应。在波长为540nm下测定光吸收值(0D值）。

　　[0046] 将上述三种酶活的测定的对照组选用经沸水煮lOmin后冷水冷却的上述粗酶液。 每个样品做三个重复。测定结果显示菌株YIC32有着较高的酶活，滤纸酶活为12.37 ± 0.13IU/mL，内切酶酶活为2.45 ±0.05IU/mL，外切酶酶活为23.60 ±0.89IU/mL(参见图3)。

　　[0048] 纤维素酶的产生及分泌能力与菌的生长状态和培养环境(如碳、氮源配比、pH等） 密切相关，本发明对发酵产酶过程中碳、氮源配比、pH进行了优化，最终使产酶能力显著提 尚。

　　[0049]优化的基础培养基为羧甲基纤维素钠培养基，由于羧甲基纤维素钠培养基配制完 成要求pH 5.5-6.0,这可能不是YIC32产纤维素酶的最优pH，且碳源、氮源的配比都影响着 产酶菌株的产酶能力，因此，本发明分别设置了？11 = 3,4,5,6,7,8-系列的?!1培养条件、羧 甲基纤维素钠培养基中羧甲基纤维素钠质量浓度百分比为〇.25%，0.5%，0.75%，1%， 1.25%-系列碳源浓度和恥勵3浓度为0.25%，0.3%，0.5%，1%，1.5%，2%-系列的氮源 浓度，并进行了正交试验。

　　[0050]结果表明，羧甲基纤维素钠培养基的pH=5、培养基中羧甲基纤维素钠浓度为 12.5g/L、培养基中NaN03浓度为5g/L时纤维素内切酶酶活最高，为2.45 ± 0.05IU/mL= 5、羧甲基纤维素钠浓度为12.5g/L、NaN03浓度为3g/L时滤纸酶活、外切酶酶活最高，产酶能 力最强，滤纸酶活达20 · 75 ± 1 · 61 IU/mL，外切酶产酶能力最强，酶活达47 · 72 ±0 · 24IU/mL。 培养条件优化后，滤纸酶活、外切酶酶活分别比原始酶活增加了67.74%和102.2% (参见图 3)〇

　　1. 一种高效产纤维素酶细菌，其特征在于：细菌(Novosphingobium sp · )YIC32，已于 2016年4月25日保藏于广东省微生物菌种保藏中心(简称GDMCC，地址为:广东省广州市先烈 中路100号大院59号楼5楼），其保藏编号为GDMCC No.60031。2. 按权利要求1所述的细菌的应用，其特征在于：所述细菌（Novosphingobium sp.) YIC32在生产纤维素酶中的应用。3. 按权利要求2所述的细菌的应用，其特征在于:将所述细菌(Novosphingobium sp.) YIC32于羧甲基纤维素钠产酶培养基中培养获得纤维素酶。4. 按权利要求2所述的细菌的应用，其特征在于:所述羧甲基纤维素钠产酶培养基成分 为：羧甲基纤维素钠5~15g、KH2P〇4 lg、NaN〇3 3~10g、KCl 0.5g、MgS〇4 0.5g、蒸馏水 1000ml、FeS〇4.7H20 0·Olg，调节pH在5·5~6·0〇

　　【发明人】李岩, 解志红, 王玲玲, 韩京龙, 常大勇, 刘卫, 任承钢

　　针对现有纤维素酶产菌易退化导致产酶能力下降的问题，提出通过物理诱变与混合培养相结合的选育方法。采用60Co-γ射线、紫外线及多种化学诱变剂对绿色木霉、里氏霉和克氏热解纤维素梭菌进行诱变处理，再...

　　发现纤维素酶在洗涤过程中可能导致织物抗拉强度下降，通过设计纤维素酶终止组合物，使酶在洗涤初期快速释放活性，随后迅速失活，从而在保持去污效果的同时减少对织物的损伤。解决思路是利用金属催化剂和漂白...

　　发现纤维素酶在洗涤过程中会导致织物抗拉强度损失，通过引入含过氧化物酶、强化因子及过氧化氢源的终止剂组合物，实现纤维素酶活性的时序控制：初期保持90%活性，5-10分钟内降至50%以下，15分钟...

　　针对传统筛选高产纤维素酶真菌效率低和成本高的问题，提出了一种新的初筛方法。采用含有特定浓度预处理木质纤维素、金属离子和其他成分的培养基，涂布被筛选菌株，并通过观察菌落生长情况及边缘菌丝地带宽度...

　　发现丝状真菌中的纤维素酶和半纤维素酶活性较低的问题。解决思路是利用一种新的激活因子基因（SEQ ID NO.1）来提高这些酶的活性，并将其导入草酸青霉中进行验证，成功获得了变异菌株WFX，其酶...

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